参考步骤： 1. 候选疫苗接种动物后采血并离心得到血清。 2. 将梯度稀释的血清与假病毒在细胞培养条件下混合孵育60分钟。 3. 将混合后的单克隆抗体加入提前铺好的细胞培养板中，设置细胞对照及病毒对照组并培养24或48小时。 4. 通过荧光素酶发光底物检测发光值评价血清的疫苗中和活性。

参考步骤： 1. 将梯度稀释的抗体与假病毒在细胞培养条件下混合孵育60分钟。 2. 将抗体与假病毒的混合液加入提前铺好的细胞培养板中，培养24或48小时。 3. 通过荧光素酶发光底物检测发光值评价抗体中和活性。

参考步骤： 1. 将梯度稀释的单克隆抗体与假病毒在细胞培养条件下混合孵育60分钟。 2. 将混合后的单克隆抗体与假病毒的混合液加入提前铺好的细胞培养板中，培养24或48小时。 3. 通过荧光素酶发光底物检测发光值评价抗体ADE活性。

参考步骤： 1. 将目标靶细胞与带有Fluc的假病毒在细胞培养板中混合预先混合孵育数小时。 2. 洗涤并离心除去残余的死细胞及未感染的病毒获得靶细胞。 3. 加入单克隆抗体并梯度稀释。 4. 向孔内加入已计数的检测细胞孵育培养数小时，检测细胞识别单克隆抗体结合的靶细胞后被激活，表达Fluc。 5. 通过发光检测测定单克隆抗体的ADCC活性。

参考步骤： 1. 将所需细胞消化计数后铺板。 2. 预先将假病毒与病毒抑制剂混合孵育，或者将已铺板的细胞与抗病毒药物预先孵育。 3. 将假病毒加入细胞培养板中混合培养48h。 4. 弃去培养板中液体，加入荧光素酶检测试剂反应2-3分钟后测定发光值。

参考步骤： 1. 实验用小鼠接受皮内或静脉注射的假病毒进行感染。 2. 在指定时间后，将实验小鼠用异氟烷气体麻醉或用戊巴比妥钠（40 mg/kg体重）腹腔注射麻醉。 3. 小鼠麻醉后腹腔注射发光底物D-荧光素（参考剂量50mg/kg 体重） 4. 约10分钟后，将实验小鼠置入活体成像系统采集成像。